同时符合以下标准：①高代谢症状和体征；②弥漫性甲状腺肿大伴或不伴血管杂音；③血清FT4增高，TSH减低。初诊时血常规检测中仅伴血小板减少者10例，其Plt值（10-78）×109/L；血小板及白细胞均减少9例，其Plt值（30-60）×109/L，WBC值（1.23-3.78）×109/L；全血细胞减少5例，WBC值（2.3-2.58）×109/L，Hb值（70-85）g/L,Plt值（57-70）×109/L。18名正常对照者中，男5例，女13例，年龄18-58岁，平均年龄40.1岁。
所用鼠抗人CD4、IFNγ、IL4、CD5、Bcl2单克隆抗体和鼠抗人CD19单抗克隆抗体均购自美国Ancell生物制剂公司，牛血清白蛋白和RPMI1640购自深圳晶美公司，聚甲基丙烯酸、依若霉素、莫能霉素及皂素购于美国Sigma公司。流式细胞仪为BeckmanCoulter公司产品。
外周血单个核细胞分离
采集患者及正常对照者的外周血4ml,以5íTA抗凝，800r/min离心10分钟，去上清，加入细胞培养液RPMI1640至4ml，混匀，用PBS等量稀释后分装于2个离心管中，用Ficoll淋巴细胞分离液（密度1.077）分离单个核细胞。
细胞培养及细胞因子分泌抑制
细胞按5×105/ml的浓度培养，并加入PMA和依若霉素以扩大原有细胞因子的产量，用莫能霉素抑制高尔基体对细胞因子的转运。基本培养基为IMDM，体系如下：10%胎牛血清、2mmol/L谷氨酰胺、50μg/ml青霉素、50μg/ml链霉素、50ng/mlPMA、250ng/ml依若霉素、140ng/ml莫能霉素。细胞与培养液混合后加入到24孔板中，在37℃、95%湿度、5%CO2培养箱内培养5小时。
用结合异硫氢酸荧光素（FITC）的鼠抗人CD4单克隆抗体直接标记细胞膜CD4，用结合藻红蛋白荧光素的鼠抗人IFNγ、IL4单克隆抗体直接标记细胞浆内的IFNγ、IL4，Th1细胞为CD4+、IFNγ+，Th2细胞为CD4+、IL4+。
CD19+CD5+细胞测定
试管中加入鼠抗人CD19FITC和鼠抗人CD5PE各20μl,再加入单个核细胞悬液100μl，混匀，4℃避光孵育40分钟，PBS液洗2遍，加入10g/L的多聚甲醛固定液200μl，混匀，4℃固定30分钟。对照管中加入鼠抗人CD19FITC和鼠抗人IgG1PE各20μl，按上述方法操作。最后用流式细胞术测定CD19+CD5+细胞，计算CD19+CD5+/CD19+的表达率。
B淋巴细胞胞浆内Bcl2表达测定
加入鼠抗人CD19FITC20μl,单个核细胞悬液100μl，4℃避光孵育30分钟，用PBS液洗2遍，加入1%的多聚甲醛固定液1ml，混匀，在4℃条件固定15分钟，各加入含1g/L皂素的PBS1ml，室温孵育60分钟，用PBS液洗2遍。在试验管中加入鼠抗人Bcl2PE单克隆抗体各20μl。对照管中加入同型不相关鼠抗人IgG1PE单克隆抗体各20μl，4℃避光孵育40分钟，用PBS液洗3遍，然后加入1%的多聚甲醛固定液200μl，混匀，4℃固定30分钟。流式细胞术测定CD19+细胞胞浆内Bcl2表达率。用流式细胞仪（FACSVantageBectonDickinson公司产品）进行细胞测定，用cellQuest3.1获取和分析细胞。
使用SPSS10.0软件分析，结果以均值±标准差（±SD）表示，计量资料的比较用t检验。
CD4+IFNγ+、CD4+IL4+细胞的检测
患者组CD4+IFNγ+和CD4+、IL4+细胞百分率增加（0.812±0.45），显著和高于正常对照组（0.39±0.24），（P<0.05）,且CD4+IL4+升高更为显著（P<0.01）；患者组CD4+IL4+/CD4+IFNγ+比值为20.55±6.15，而正常对照组0.52±0.12（P<0.01），提示CD4+IFNγ+/CD4+IL4+比例失衡，尽管CD4+IFNγ+细胞相应增加，仍未能使之平衡（图1、附表）。
患者组外周血CD5+CD19+细胞占CD19+细胞的比例为（20.89±1.62）%，正常对照组为（7.89±0.38）%，患者组明显高于正常对照，差异有显著性（P<0.05）。患者组CD5+CD19+细胞中位荧光强度（20.6±2.74）%,明显高于正常对照（9.78
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